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PRACTICA 21: SIEMBRA EN ANAEROBIOSIS

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18.02.20 OBJETIVO. Observar el crecimiento de microorganismos en anaerobiosis MATERIAL. Placa petri con agar sangre. Hisopo. Mechero bunsen. Jarra de anaerobiosis. Estufa. Microscopio. GENbox anaer. PROCEDIMIENTO. Pasamos un hisopo por la boca para recoger el microorganismo. Sembramos la placa con agar sangre por agotamiento de estrías. Ponemos la placa en la jarra de anaerobiosis y colocamos un sobre abierto de GENbox anaer. De esta forma creamos una atmósfera anaerobia en la que sólo crecerán este tipo de microorganismos (anaerobios) Ponemos en la estufa e incubamos a 37ºC durante 24 horas. Tras este periodo de tiempo observamos el crecimiento de anaerobios en el microscopio. Pero primeramente realizamos una tinción de Gram El resultado fue que nos encontramos con bacilos Gram negativos

PRACTICA 20: VISUALIZACIÓN DE HONGOS CON TECNICA DE FISO

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18.02.20 OBJETIVO. Observar hongos a microscopio. MATERIAL Portaobjetos. Cubre. Pinzas. Fiso. Azul de lactofenol. Microscopio. PROCEDIMIENTO. Cogemos un trozo de fixo y lo pegamos sobre el hongo con ayuda  de unas pinzas. Colocamos el fixo boca arriba sobre un porta y añadimos una gota de azul de lactofenol. Colocamos un cubre encima. Es importante que el fixo quede lo más estirado posible. Visualizamos a microscopio (condensador bajo y diafragma casi cerrado) Podemos observar MACROCONIDIAS.

PRÁCTICA 19: TINCIÓN SIMPLE DE HONGOS

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13.02.2020 OBJETIVO Determinar la presencia de hongos y su observación FUNDAMENTO La tinción de Azul de lactofenol se emplea para observar hongos. Es una tinción simple (un sólo colorante) y como tal está basada en la afinidad del colorante por componentes de las células, en este caso por las estructuras fúngicas. El azul de lactofenol tiene tres características que lo hacen especial para observar dichas estructuras en los hongos del tipo moho obtenidos en los cultivos por aislamiento. El fenol destruye la flora acompañante (algunas veces en los cultivos, juntos a los hongos pueden crecer colonias de bacterias) El ácido láctico conserva las estructuras fúngicas al crear, por decirlo de algún modo, una película que las protege  provocado por un cambio de gradiente osmótico entre el interior y el exterior de dicha estructura. El azul de algodón tiene la capacidad de adherirse a las hifas y conidios de los hongos microscópicos También se realiz...

PRACTICA 18: SIEMBRA DE HONGOS

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11.02.2020 FUNDAMENTO Los hongos son generalmente aerobios estrictos, en cambio las levaduras pueden crecer con o sin oxígeno; en presencia de éste crecen mejor. Las levaduras crecen más rápido que los hongos. Existen varios medios de cultivo recomendados para alimentos, para reducir el crecimiento bacteriano, algunos utilizan valores de pH bajos (≈4), otros la adición de antibióticos Este procedimiento se aplica a todos los alimentos de consumos humano o animal en los cuales el ambiente es menos favorable para el crecimiento bacteriano. Humedad, alto contenido en sal o azúcar, baja temperatura de almacenamiento, la presencia de antibióticos o exposiciones a irradiación. Objetivo: Conocer el número de Mohos y Levaduras que contiene un alimento MATERIALES: Gradilla Asa de platino Portaobjetos y cubre PROCEDIMIENTO : Primero nos  hicimos con una mandarina que macroscópicamente se veía que presentaba un hongo. Con un asa de siembra estéril cogimos un ...

PRÁCTICA 17: TEST DE FILAMENTACION

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07.02.2020 OBJETIVO El test de filamentación sirve para poder detectar el tubo germinal de C.albicans . FUNDAMENTO El tubo germinal es una extensión filamentosa de la levadura, sin estrechamiento en su origen, cuyo ancho suele ser la mitad de la célula progenitora y su longitud tres o cuatro veces mayor que la célula madre. Esta prueba es útil para diferenciar C. albicans del resto de las especies de Candida, aunque no está exenta de falsos negativos. Material necesario: Mechero bunsen Tubo de ensayo Asa de siembra Gradilla Estufa Microscopio Porta y cubre objetos PROCEDIMIENTO Se suspendió una colonia de Candida albicans en 0’5 ml de suero humano, se incuba a 37ºC/2 horas y se d epositar una gota de la emulsión sobre un portaobjetos limpio y desengrasado, colocar un cubre-objetos y visualizar al microscopio.  Positivo cuando se observan prolongaciones de la célula madre sin constricción en su punto de origen (tubos germinal...

PRÁCTICA 16: EXUDADO VAGINAL

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04.02.2020 OBJETIVO Se realiza un cultivo y un frotis para determinar la posibilidad de infección de enfermedades de transmisión sexual. FUNDAMENTO Se realiza exudado vaginal para determinar la presencia de N.gonorrehae, Candida sp., etc MATERIAL. Hisopo. Portaobjetos Pinzas de madera. Paralelas Cubetas de tinción  Agua destilada Mechero bunsen Microscopio PROCEDIMIENTO Tomamos la muestra en dos escobillones, un hisopo con medio para la realización de los cultivos y otro sin medio para el frotis con posterior tinción y observación microscópica. Primero tras la toma de muestra, hicimos las extensiones, desecación y fijación con mechero bunsen, luego realizamos una tinción simple y una tinción de Gram. Se dejó secar el porta y se observó al microscopio, solo logramos observar células epiteliales. También se realizó un cultivo en Sabouraud, Mueller Hinton y Agar manitol salado, y se puso en la estufa 48 horas, tr...

PRÁCTICA 15: COPROCULTIVO

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28.01.2020 OBJETIVO Aislar e identificar al microorganismo responsable del proceso diarreico FUNDAMENTO Microorganismos como los protozoos, bacterias y virus pueden ser responsables de cuadros gastrointestinales. Ante la sospecha de gastroenteritis es necesario realizar un cultivo de heces o coprocultivo que permita aislar e identificar al microorganismo responsable del proceso diarreico. Material necesario : Mechero Bunsen Asa de platino Agua destilada estéril Inóculo de la muestra Medios de cultivo PROCEDIMIENTO Para realizar la siembra se utilizaron medios de cultivo enriquecidos y altamente selectivos para aislar únicamente a los gérmenes patógenos. Los medios utilizados son: Agar Salmonella- Shigella. Caldo selenito. Agar sangre Agar Hektoen XLD 1. Realizamos una suspensión en 2,5 mL de solución salina estéril, tomando una porción de heces del tamaño de un guisante y agitando hasta su homogeneización. 2. La siembra se realiza ...